IXplore IX85 Spin

概述

	快速采集细胞高速动态变化过程 IXplore IX85-Spin 系统结合优秀的转盘装置和高性能成像工具，为您在延时实验中提供快速 3D 共聚焦图像采集和更长的细胞存活时间。 Download the IX85 Brochure

快速采集
细胞高速动态变化过程

IXplore IX85-Spin 系统结合优秀的转盘装置和高性能成像工具，为您在延时实验中提供快速 3D 共聚焦图像采集和更长的细胞存活时间。

令人惊叹的清晰共聚焦图像

借助 Yokogawa CSU-W1 转盘装置，IXplore IX85-Spin 系统可帮助您获取高速共聚焦图像，并在更宽区域内进行更高效的图像拼接。为了让您看得更多，我们应用了 TruSight 反卷积算法，以提高图像的分辨率、对比度和动态范围，即使在更大的观察深度下也能获得令人惊叹的清晰 3D 图像。

*图像：NIH 3T3 细胞（蓝色：细胞核，绿色：微管蛋白，品红色：线粒体，灰色：纤维核）
样本由 EnCor Biotechnology Inc. 提供

	在更大深度下生成精确的 3D 图像 IXplore IX85-Spin 系统的 Yokogawa 转盘装置的针孔几何结构在更大深度下为更厚的样本成像提供了出色的图像对比度。此外，IXplore IX85-Spin 还允许您将高数值孔径的硅油物镜或我们突破性的新型硅胶多层浸液式物镜（LUPLAPO25XS）与新的自动校正环相结合，以实现卓越的光收集能力和尺寸保真度。这些特性使 IXplore IX85-Spin 成为您在不牺牲速度、准确性或图像质量的情况下，对活细胞进行高分辨率成像的可靠选择。我们的新型 LUPLAPO25XS 引入了突破性的硅胶垫技术。凭借高数值孔径和长工作距离优势，您可以更深入地观察样本，揭示以前无法触及的结构。这款硅胶垫物镜结合了硅油浸液的质量与干式物镜的易用性。新型 LUPLAPO25XS 优化了类器官、3D 细胞培养、孔板以及广泛应用的实验流程。
XYZ 图像对比：左：LUPLAPO25XS（硅胶物镜），右：UPLXAPO20X（干式物镜）由 IX85-Spin 拍摄的 HeLa*1细胞球（青色：细胞核，品红色：微管）

在更大深度下生成精确的 3D 图像

IXplore IX85-Spin 系统的 Yokogawa 转盘装置的针孔几何结构在更大深度下为更厚的样本成像提供了出色的图像对比度。此外，IXplore IX85-Spin 还允许您将高数值孔径的硅油物镜或我们突破性的新型硅胶多层浸液式物镜（LUPLAPO25XS）与新的自动校正环相结合，以实现卓越的光收集能力和尺寸保真度。这些特性使 IXplore IX85-Spin 成为您在不牺牲速度、准确性或图像质量的情况下，对活细胞进行高分辨率成像的可靠选择。

我们的新型 LUPLAPO25XS 引入了突破性的硅胶垫技术。凭借高数值孔径和长工作距离优势，您可以更深入地观察样本，揭示以前无法触及的结构。这款硅胶垫物镜结合了硅油浸液的质量与干式物镜的易用性。新型 LUPLAPO25XS 优化了类器官、3D 细胞培养、孔板以及广泛应用的实验流程。

XYZ 图像对比：左：LUPLAPO25XS（硅胶物镜），右：UPLXAPO20X（干式物镜）
由 IX85-Spin 拍摄的 HeLa*1细胞球（青色：细胞核，品红色：微管）

同时实现高速多通道成像

IXplore IX85-Spin 激光耦合器可从两条激光线扩展到六条，并且支持多相机配置，以满足您对更高速度或更宽信息带宽的需求，实现同时多通道成像。激发波长包括 405 nm、445 nm、488 nm、514 nm、561 nm 和 640 nm。

培养的 Cos 7 细胞
蓝色：细胞核，绿色：线粒体，红色：微管蛋白，品红色：肌动蛋白

IXplore IX85 自动倒置显微镜系统

作为 IXplore IX85-Spin 系统的基础，IXplore IX85 提供了更大的视场（FOV）和一系列先进的端到端成像功能，让您能够看到和捕捉到比以往更多的细节，同时还大幅缩短了采集时间。体验 IXplore IX85 显微镜系统带来的卓越速度、清晰度和可靠性。

了解更多关于 IXplore SpinSR 显微镜系统的信息

了解采用转盘共聚焦技术的 Evident 显微镜在生命科学研究中的应用

N. Elkhatib, et al. Tubular clathrin/AP-2 lattices pinch collagen fibers to support 3D cell migration. Science (June 16, 2017).

R. H. Herbst, et al. Heterosis as a consequence of regulatory incompatibility. BMC Biology (May 11, 2017).

N. Yanagisawa, et al. Capability of tip-growing plant cells to penetrate into extremely narrow gaps (May 3, 2017).

H. Cohen-Dvashi, et al. The role of LAMP1 binding and pH sensing by the spike complex of Lassa virus. Journal of Virology (September 7, 2016).

H. Ochiai, et al. Simultaneous live imaging of the transcription and nuclear position of specific genes. Nucleic Acids Research (June 19, 2016).

B. Guirao, et al. Unified quantitative characterization of epithelial tissue development. eLIFE (December 12, 2015).

I. Nemazanyy, et al. Class III PI3K regulates organismal glucose homeostasis by providing negative feedback on hepatic insulin signalling. Nature Communications (September 21, 2015).

K.Gooh, et al. Live-cell imaging and optical manipulation of arabidopsis early embryogenesis. Developmental Cell (July 9, 2015).

Y.Oda, et al. Rho of plant GTPase signaling regulates the behavior of arabidopsis kinesin-13A to establish secondary cell wall patterns. The Plant Cell (November 26, 2013).

*虽然它已经成为医学研究中重要的细胞系之一，但我们必须认识到 Henrietta Lacks 对科学的贡献是在未经她同意的情况下发生的。这一不公正现象在导致免疫学、传染病和癌症方面重大发现的同时，也引发了关于医学中的隐私、伦理和授权许可方面的重要对话。
要了解更多关于 Henrietta Lacks 的生平和她对现代医学的贡献，请点击这里。
http://henriettalacksfoundation.org/