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독특한 FLUOVIEW FV10i-DOC는 완전 자동 컨포컬 레이저 스캐닝 현미경입니다.이 현미경의 완전히 새롭게 고안된 설계는 다양한 기능과 일체형 구성을 통합하여 경험이 없는 사용자와 초심자도 간단하고 효율적으로 고품질의 컨포컬 이미징이 가능합니다.Olympus는 인 체 공학적 설계 및 이미지 품질을 우선시하며, 고품질 광학 부품과 스마트하고 쉬운 소프트웨어를 사용합니다.
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독특하고 사용하기 쉬우면서 작은 공간만을 사용하는 일체형 컨포컬 레이저 스캐닝 현미경
FV10i는 독특한 일체형 설계가 특징입니다. 간편하고 최적화된 배양기 및 레이저 컴바이너 등의 주요 구성 요소들이 성능 저하 없이 일체형으로 통합되었습니다. 설치와 사용이 쉬운 이 시스템은 고사양 컨포컬 레이저 스캐닝 현미경의 기능, 진동방지 그리고 암실 환경을 동시에 제공합니다.그 결과 FV10i는 초보자와 숙련자 모두 사용할 수 있고 별도의 암실 없이 최소한의 공간에 설치할 수 있습니다.
1.암실 불필요 | 현미경 본체와 커버가 빛이 들어오지 않도록 일체형으로 결합되어 있습니다. FV10i는 암실을 필요로 하는 기존 컨포컬 레이저 스캐닝 현미경과 달리 실험실에서 쉽게 사용할 수 있습니다. |
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2.스캐닝 유닛 | 이 시스템은 자동으로 스캐닝 유닛의 세팅을 형광 염료에 맞춰 설정하는 검출기가 장착되어 있습니다.각 형광 염색의 최적 조건으로 이미징을 수행할 수 있습니다. |
3.현미경 기능 | FV10i의 우수한 광학 및 기계 모듈은 완벽하게 통합되어있습니다.FV10i는 10×, 60× 대물렌즈와 광학 줌을 사용하여 10×에서 600× 배율의 이미지를 획득할 수 있습니다. |
4.방진 기능 | 진동흡수장치가 내장되어 있습니다. 진동방지테이블이 필요하지 않으므로 실험대 위에 바로 설치될 수 있습니다. |
5.레이저 결합기 컴바이너 | 다이오드 레이저 유닛 4개가 내장되어 있으며, 각 유닛은 기존 컨포컬 시스템(Traditional Confocal System)보다 긴 수명 및 소비 전력 절약을 위한 소형 다이오드 레이저를 사용하고 있습니다. |
4개의 다이오드 레이저 내장
이 시스템은 네 개의 레이저(405/473/559/635nm)가 장착되어 있습니다.최대 4가지의 형광이 염색된 다중 염색 시료의 영상을 촬영할 수 있습니다.유지보수가 필요 없는 긴 수명의 절전형 다이오드 레이저는 모든 레이저 유닛에 사용되었으며 소음 또한 없습니다.
검출기는 새로이 개발된 스펙트럼 방식을 사용합니다
신호 검출은 두 개의 형광 채널과 하나의 위상차(Phase Contrast) 채널들로 구성됩니다.형광 채널은 분광격자, 빔 분배기, 슬릿으로 구성된 새로운 스펙트럼 방식이 적용되었습니다.여기에, 각 형광 시약의 특성에 최적화된 파장대역을 자동으로 설정하는 가변형 배리어 필터 기능이 추가되었습니다.
두 가지 시퀀셜 촬영 모드
FV10i는 두 가지의 시퀀셜 촬영 모드가 장착되어 있습니다. 라인 시퀀스로 두 개의 형광 염색을, 프레임 시퀀스 및 가상 채널 기능(virtual channel function)으로 서너 개의 형광 염색 이미지를 색상 겹침에 따른 혼선 없이 획득할 수 있습니다.
10x와 60x 대물렌즈가 시스템에 장착되어있습니다.
이 시스템에는 10×와 60×가 장착되어 있습니다. 줌 배율은 10×에서 600×까지 연속 변경이 가능합니다.표본의 크기 가장 적합한 이미징 영역 설정이 가능합니다.
내장형 배양기
이 시스템은 배양기가 내장되어 있어 따로 설치해야 하는 시간의 낭비 없이 손쉽게 라이브 셀의 타임랩스 이미징이 가능합니다.배양 용기 안의
환경은 온도 섭씨 37도, 습도 90%, 그리고 CO2 농도 5%*로 유지됩니다.최대 3일 동안의 타임랩스 이미징을 지원합니다.
* 5%의 CO2 배양 환경을 유지하기 위해 6 % CO2를 150 ml/분 속도로 주입할 것을 권장합니다.
전용 배양 용기가 제공됩니다
이 시스템은 전용 배양 용기를 제공합니다. (직경35mm 지름의 유리 바닥 디쉬.)타임랩스 이미징을 하는 동안 배양 용액의 순환 및 공급이 가능합니다.게다가, 이 배양 용기 시스템은 고온 증압 멸균이 가능합니다.
타임랩스
배양기와 주변 공간은 37도로 유지됩니다.
Celsius*. 따라서 장시간의 타임랩스 이미징이 진행되는 동안 세포 활성을 유지할 수 있습니다.
*주위 온도 변화는 초점 조절 안정성에 영향을 줄 수 있습니다.
물을 자동으로 워터 이머전 대물렌즈에 공급합니다.
새롭게 개발된 이머전 용액 공급 시스템은 FV10i의 워터 이머전용 대물렌즈 위에 자동으로 물 공급이 가능합니다.이머전 용액의 증발의 걱정 없이 장시간의 타임랩스 이미징이 가능합니다.대물렌즈가 관찰 위치로 이동할 때 물이 자동으로 공급됩니다.
커버 글래스 두께 감지 및 Correction Collar의 자동 조절
이 시스템은 커버 슬라이드 두께를 탐지할 수 있으므로 워터 이머전 대물렌즈를 사용 시, Correction Collar가 자동 조절됩니다.이는 매번 최적의 조건으로 이미징을 할 수 있게 만들어 줍니다.
여러 영역의 타임랩스 이미징을 지원
이 시스템에는 전동 재물대가 기본 장착되어 여러 지역에서의 타임랩스 이미징이 가능합니다.한 배양 접시(혹은 웰) 당, 10개의 지역을 지정할 수 있습니다.예를 들어, 직경 35mm 지름의 유리 바닥 디쉬 3개를 사용할 시, 최대 30개 지점을 촬영할 수 있습니다.
스트레스를 유발하지 않는 편리한 작동 방식
사용자는 수동으로 단 두 가지 동작을 하면 됩니다: 표본을 재물대에 올리고 커버를 닫는 것. 그 후, 정교한 사용자 인터페이스는 확실하고 효율적인 현미경 조작을 제공합니다. 촬영 기술이나 전문가 없이도 새로이 디자인된 이미지 맵핑 메뉴를 통하여 쉽게 영상을 촬영할 지역을 선택할 수 있습니다.더 나아가서, Olympus 제품에서만 볼 수 있는 고급 기능을 사용하여 초점 및 휘도의 자동 조절이 가능하므로 표본의 종류 및 관찰 모드에 맞춰 최적의 이미징 상태가 만들어집니다. 게다가, 이 시스템의 안내 기능은 각 이미징 과정의 작동 단계 파악을 도와주면서 사용자를 다음 작동 방법으로 안내합니다. 그러므로 FV10i 컨포컬 레이저 스캐닝 현미경은 처음 사용하는 사람도 스트레스 없이 편하게 작동할 수 있는 환경을 제공합니다.
설정
표본을 올려두고, 시료에 사용된 형광 시약 종류를 선택. FV10i는 선택된 형광 시약에 적합한 이미징 조건을 자동 선택합니다.
이미지 맵 생성 메뉴
<시작(Start)> 버튼만 클릭하면, 표본의 맵 이미지가 자동으로 생성됩니다. 이로써 사용자는 얻고자 하는 이미지 획득 지점을 손쉽게 확인할 수 있습니다.
이미지 획득
정교한 오퍼레이팅 소프트웨어를 통해 촬영 영역이 또는 줌 배율을 신속히 설정할 수 있습니다.버튼만 클릭하면 이미지 획득이 완료됩니다.
표본을 장착한 후, 맵 이미지는 "맵 이미지 획득" 창의 시작(<Start>) 버튼을 클릭하여 얻을 수 있습니다.이러한 표본의 전체 조감도를 통해 사용자는 빠르고 손쉽게 획득할 이미징 영역을 선택할 수 있습니다.
지도 영역 생성
맵 이미지는 고배율 촬영이 가능한 이미지 영역을 전체를 한 눈에 보여 줍니다. 선택 가능한 맵 영역은 도면에 사용된 35mm 직경 배양 접시나 유리 슬라이드와 같은 표본 홀더의 종류에 알맞게 자동으로 표시됩니다.영역을 선택할 수 있고 원하는 스캔 영역을 다이어그램에서 클릭하여 맵 이미지(Map Image)를 획득할 수 있습니다.이 것은 "맵 이미지" 스크린 상의 전체 보기 영역에 표시됩니다.다른 지역을 단 한 번으로 클릭으로 선택할 수 있습니다.
형광 시약 선택
형광 시약 별로 분리된 맵 이미지 표시가 가능합니다. 이들 이미지는 개별 혹은 서로 겹쳐지게 표시할 수 있습니다.
스캐닝 설정
실험 조건에 따라 두 가지 스캐닝 방식 중 하나를 선택할 수 있습니다.
자동
맵 이미지는 중앙에서 바깥쪽으로 향하는 나선형 패턴으로 자동 획득되어 초보자도 이미징 영역을 쉽게 얻고 확인할 수 있습니다.
수동
최대 9 x 9의 맵 이미지 영역을 선택할 수 있습니다.수동 선택은 ROI(Region of Interest: 관심 영역)을 미리 좁힐 수 있어서 자동 선택보다 효율적입니다.
표본의 맵 이미지를 자동으로 생성됩니다.
어떤 표본 홀더가 사용되었는지 자동으로 감지하여 맵 이미지를 생성합니다. 고속의 저해상도 혹은 저속의 고해상도 이미지 맵 생성 설정이 가능합니다.
촬영하고자 하는 이미징 영역을 맵 이미지 및 직관적인 사용자 환경과 확대 기능이 있는 라이브 이미지 스크린을 사용하여 선택할 수 있습니다. 사용자 친화적인 탐색 기능으로 초보자도 손쉽게 이미지를 획득할 수 있습니다.
관찰 모드 선택 |
타임랩스, Z-stack 및 다 지역 촬영을 포함한 다섯 종류의 관찰 모드를 선택할 수 있습니다.
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다중 지역 설정 | 다중 지역 이미징을 위한 각 영역을 등록합니다. 각 영역에 적합한 이미징 조건을 설정할 수 있습니다. |
맵 이미지 | 맵 이미지 획득([Acquire Map Image)]에서 획득된 영상이 표시됩니다. 특정 영역을 선택하여 더욱 자세한 검사를 할 수 있습니다. |
컨트롤 화면 | 이미징 조건을 다양한 컨트롤러의 작동 방법에 맞춰 세세하게 설정할 수 있습니다. 주요 설정 포함:
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라이브 이미지 | 맵 이미지 스크린에서 선택한 지점이 표시됩니다.이미징 영역은 프레이밍 및 줌 기능으로 결정할 수 있습니다.이곳에서 각 형광 시약 별 표시 전환이 가능합니다. |
이 시스템은 사용자 친화적인 탐색 기능이 장착되어 있습니다.
탐색(<Navigation>) 버튼을 클릭하면 조작 방법이 나타나고 조작 버튼이 강조됩니다.탐색 안내문을 따르기만 하면 손쉽게 이미징을 완료할 수 있습니다.
스티칭 기능
광각 고해상도 이미징은 인접 영역을 획득하여 얻을 수 있습니다.슬라이드 글래스 전체의 맵 이미지(Map Image) 역시 제작 할 수 있습니다.
소프트웨어 ZDC 기능 (FV10i-LIV만 가능)
Z축 초점 흐름 보정 기능 (소프트웨어 ZDC)는 타임랩스 중 온도 변화로 발생하는 초점 변화를 감소시킵니다.
전용 Olympus 소프트웨어가 기본 구성에 포함되며 FV10i로 얻은 이미지의 편집 및 분석 기능도 제공됩니다.
3D 표시 기능(No.1) | FV10i는 3D 표시 기능을 위한 알파 블렌드 방법(Alpha Blend method) 및 최대 강도 투시 방법(Maximum Intensity Projection method)을 지원합니다.또한, 시스템은 자유롭게 3D 영상의 각도를 바꾸거나 원하는 표현 범위 만큼 자를 수 있는 다양한 표시 기능을 갖췄습니다. | ||||||||
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손쉬운 이미지 검색(No.2) | 사용자는 메인 스크린에서 미리보기 사진을 통해 손쉽게 이전 이미지 데이터를 찾을 수 있습니다. | ||||||||
2D 분석 도구(No.3) |
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데이터 매니저(No.4) | 데이터 매니저는 썸네일 사진과 다양한 파일 정보를 표시해줍니다. |
파일 입/출력
OIF(Olympus Image Format)는 다양한 매개 변수 설정과 이미지 데이터를 함께 저장하기 위해 사용됩니다.이 소프트웨어는 TIFF, BMP, JPEG와 같은 자주 사용되는 다양한 형식을 지원할 수 있는 호환성을 보유하고 있습니다.
다양한 표본 홀더 포함
이 시스템은 표본 홀더가 장착되어 있습니다. (직경35mm 지름의 유리 바닥 디쉬, 8well 커버 글래스 챔버, 8well 슬라이드. 오염 방지용 플라스틱 커버를 사용하여 시료의 오염 걱정 없이 관찰할 수 있습니다. 35mm 지름의 유리 바닥 디쉬.
넓은 시야 내의 모자이크 이미지 획득
인접한 영역을 결합하여 매우 큰 모자이크 이미징이 가능합니다. 넓은 시야 영역을 고해상도로 획득할 수 있습니다.
고용량의 이미지 데이터를 저장하기 위한 HDD 레코딩 기능
현미경은 HDD 레코딩 기능이 장착되어 있습니다. 획득한 이미지는 메모리를 거치지 않고 하드 디스크에 자동으로 저장됩니다. 장 시간의 타임랩스 이미징과 같은 고용량 데이터도 저장할 수 있습니다. 이미징을 하는 도중에도 이전 촬영한 영상의 편집/분석을 할 수 있습니다. 네트워크에 연결된 외장 하드디스크를 대상으로 지정할 수 있고 시스템이 이미징을 수행하는 동안 원격 PC에서 저장된 이미지를 볼 수 있습니다.
Laser Unit > Qualified IR Pulsed Laser with Negative Chirp for Multiphoton Excitation | - | |
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Laser Unit > Automatic Introduction Optic |
Built-in
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Laser Unit > Optional Visible Light Laser for Stimulation | - | |
레이저 유닛 > 가시광선용 LD 레이저 > 405nm |
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레이저 유닛 > 가시광선용 LD 레이저 > 440nm |
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레이저 유닛 > 가시광선용 LD 레이저 > 473nm |
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레이저 유닛 > 가시광선용 LD 레이저 > 559nm |
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레이저 유닛 > 가시광선용 LD 레이저 > 635nm |
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레이저 유닛 > 헬륨네온 그린 레이저 (543 nm, 1 mW) |
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스캐닝 및 검출 > 주 스캐너 > 기본 레이저 포트 |
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스캐닝 및 검출 > 주 스캐너 > 검출기 > 기본형 |
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스캐닝 및 검출 > 주 스캐너 > 검출기 > 냉각형 GaAsP-PMT 2채널 |
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스캐닝 및 검출 > 주 스캐너 > 검출기 > 4번째 검출기 옵션 |
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스캐닝 및 검출 > 주 스캐너 > 광 검출 방식 > 아날로그 집적 방식 |
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스캐닝 및 검출 > 주 스캐너 > 광 검출 방식 > 하이브리드 포톤 카운팅 |
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스캐닝 및 검출 > 주 스캐너 > VIS - UV - IR 여기광 분배기 터렛 |
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스캐닝 및 검출 > 주 스캐너 > 광분배기 터렛 |
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Scanning and Detection > Main Scanner > Wavelength Selection | Variable barrier fi lter mechanism for fl uorescence channel by diffraction grating and slit | |
스캐닝 및 검출 > 갈바노메터 스캐너 (일반 이미징) > 갈바노메터 미러 스캐너 (X, Y) |
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Scanning and Detection > Galvanometer Scanner (Normal Imaging) > Scanning Modes > 2D | XY | |
Scanning and Detection > Galvanometer Scanner (Normal Imaging) > Scanning Modes > 3D | XYT, XYZ | |
Scanning and Detection > Galvanometer Scanner (Normal Imaging) > Scanning Modes > 4D | XYZT | |
Scanning and Detection > Galvanometer Scanner (Normal Imaging) > Scanning Modes > 5D | - | |
Scanning and Detection > Galvanometer Scanner (Normal Imaging) > Scanning Modes > Other |
Map image, one shot
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스캐닝 및 검출 > 갈바노메터 스캐너 (일반 이미징) > 스캐닝 속도 |
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Scanning and Detection > Galvanometer Scanner (Normal Imaging) > Pinhole |
Single motorized
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스캐닝 및 검출 > 갈바노메터 스캐너 (일반 이미징) > 스캐닝 줌 |
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Scanning and Detection > Resonant Scanner (High-Speed Imaging) > Scanning Modes > 2D | - | |
Scanning and Detection > Resonant Scanner (High-Speed Imaging) > Scanning Modes > 3D | - | |
Scanning and Detection > Resonant Scanner (High-Speed Imaging) > Scanning Modes > 4D | - | |
Scanning and Detection > Resonant Scanner (High-Speed Imaging) > Scanning Modes > 5D | - | |
Scanning and Detection > Resonant Scanner (High-Speed Imaging) > Scanning Modes > other | - | |
Scanning and Detection > Resonant Scanner (High-Speed Imaging) > Scanning Speed | - | |
Scanning and Detection > Resonant Scanner (High-Speed Imaging) > Scanning Zoom | - | |
스캐닝 및 검출 > 시야수 (Field Number_NA) |
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스캐닝 및 검출 > Z축 구동부 |
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Scanning and Detection > Transmitted Light Detector Unit | Phase Contrast: 1 channel | |
현미경 > 프레임 |
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현미경 > 프레임 > 도립 |
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현미경 > 대물렌즈 및 초점 조절 > 대물렌즈 |
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현미경 > 대물렌즈 및 초점 조절 > 자동 초점(AF: Autofocus) |
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현미경 > 대물렌즈 및 초점 조절 > 물 공급 |
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현미경 > 대물렌즈 및 초점 조절 > 오일 공급 |
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현미경 > XY 재물대 > XY 동작 방식 |
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현미경 > XY 재물대 > 표본 홀더 |
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현미경 > 배양기 > 사용 환경 |
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현미경 > 배양기 > 온도 조절 방법 |
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시스템 컨트롤 > 컨트롤러 |
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System Control > Power Supply Unit | - | |
광학 유닛 > SIM 스캐너 |
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광학 유닛 > TIRF 유닛 |
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Software > Image Acquisition | - | |
Software > Programmable Scan Controller | - | |
Software > 2D Image Display | - | |
Software > 3D Visualization and Observation | - | |
Software > Image Format | - | |
Software > Spectral Unmixing | - | |
Software > Statistical Processing | - | |
Software > Optional Software | - | |
Software > Image Acquisition Mode |
Map image, one shot, time-lapse (XYT), Z-stack (XYZ), Z-stack time-lapse (XYZT), multi area time-lapse (Multi Area XYT), multi area
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Software > Map Image Acquisition | Automatic selection of map image of 3 x 3 – 35 x 7 fields according to 10 X objective lens (The maximum area varies in accordance to the specimen holder used), and manual selection of map acquisition area | |
Software > Multi Area Time-Lapse |
Automatic multi area time-lapse by motorized XY stage
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Software > Image Acquisition Area | Area appointment: All area, clipping square area (minimum area: 96 x 96 pixels) | |
소프트웨어 > 이미지 표시 |
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Software > Cross Talk Reduction | Line sequential action (2 channel), or frame sequential action (3 channel and 4 channel) | |
소프트웨어 > 획득 이미지 파일 유형 |
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소프트웨어 > 보기에 사용할 이미지 파일 유형 |
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Software > Image Editing | LUT: pseudo color setting, contrast adjustment, Comment: inputting graphic, text, scale etc., image extraction, combination | |
Software > 3D Image Construction | 3D display: AlphaBrend method, Maximum intensity projection method 3D animation display, free orientation of cross section display | |
소프트웨어 > IR 레이저 제어 |
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크기, 무게, 전력 > 스캔 유닛 및 현미경 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 스캔 유닛 및 현미경 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 스캔 유닛 및 현미경 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 형광 조명 장치 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 형광 조명 장치 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 형광 조명 장치 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 투과광 검출 장치 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 투과광 검출 장치 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 투과광 감지 장치 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 현미경 컨트롤 유닛 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 현미경 컨트롤 유닛 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 현미경 컨트롤 유닛 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > FV 전원 공급 장치 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > FV 전원 공급 장치 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > FV 전원 공급 장치 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 레이저 컴바이너 전원 공급 장치 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 레이저 컴바이너 전원 공급 장치 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 레이저 컴바이너 전원 공급 장치 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 아르곤 레이저 헤드 및 레이저 컴바이너 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 아르곤 레이저 헤드 및 레이저 컴바이너 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 아르곤 레이저 헤드 및 레이저 컴바이너 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 아르곤 레이저 헤드 제외한 레이저 컴바이너> 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 아르곤 레이저 헤드 제외한 레이저 컴바이너 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 아르곤 레이저 헤드 제외한 레이저 컴바이너 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > LD559 레이저 전원 공급 장치 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > LD559 레이저 전원 공급 장치 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > LD559 레이저 전원 공급 장치 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 멀티 아르곤 레이저 전원 공급 장치 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 멀티 아르곤 레이저 전원 공급 장치 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 멀티 아르곤 레이저 전원 공급 장치 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 헬륨네온 그린 레이저 전원 공급 장치 > 규격 (mm) |
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크기, 무게, 전력 > 헬륨네온 그린 레이저 전원 공급 장치 > 무게 (kg) |
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크기, 무게, 전력 > 헬륨네온 그린 레이저 전원 공급 장치 > 소비 전력 |
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크기, 무게, 전력 > 작동 환경 (실내 사용) > 주위 온도 | 18 - 28 ℃ (fluctuation ±2 ℃) | |
크기, 무게, 전력 > 작동 환경 (실내 사용) > 최대 상대습도 | 30 - 80 % (non condensing) |
세포 주기 표지자 Fucci를 사용한 줄기 세포 생리 상태의 시각화 (Visualization of Physiological State of Stem Cells Using Cell Cycle Marker Fucci)
Fucci로 세포 주기가 표지된 CD133-양성 인간 위암세포는 타원체를 포함하고 있으며, 배양하여 장시간 연속적으로 관찰할 수 있습니다. (Spheroids consisted of CD133-positive human gastric cancer cells
with cell cycle marker Fucci were cultured and observed continuously over an extended period.)슬라이드의 상부 패널은 타원체를 배양액 없이 배양함으로써 세포 주기를 멈춰 줄기세포 상태를 유지합니다.한편,
하단 패널에는 타원체를 세포 분열에 필요한 혈청과 함께 배양하였습니다.이 이미지는 타원체들이 단층 배양 상태로 전환하는 모습을
나타냅니다. (줄기세포와 유사한 상태를 상실)컨포컬 레이저 스캐닝 현미경(Confocal Laser Scanning Microscope) FV10i로 두꺼운 타원체를 입체적으로 관찰할 수 있습니다.
*이 이미지는 컨포컬 레이저 스캐닝 현미경(Confocal Laser Scanning Microscope) FV10i로 48시간 동안 연속으로 촬영하였습니다. |
이미지 데이터 제공 :
Shuya Yano, Toshiyoshi Fujiwara
Department of Gastroenterological Surgery Transplant and Surgical oncology, Okayama University Graduate School of Medicine, Dentistry and Pharmaceutical Sciences.
Reference:
Yano S, Tazawa H, Hashimoto Y, Shirakawa Y, Kuroda S, Nishizaki M, Kishimoto H, Uno F, Nagasaka T, Urata Y, Kagawa S, Hoffman RM, Fujiwara T. 유전자 재조합 종양 용해성 아데노 바이러스(genetically engineered oncolytic adenovirus)는 정지 암 줄기세포와 같은 세포(quiescent cancer stem-like cells)를 S/G2/M 단계로 유도하고 가둡니다.Clin Cancer Res. December 1, 2013 19:6495-6505.
잠재 암의 Telomelysin (OBP-301)에 의한 줄기세포의 활성화 및 세포 파괴 (Activation and Cell Destruction of Stem Cells from Sleeping Cancer by Telomelysin (OBP-301))
CD133-양성, 줄기세포 상태 위암 세포와 타원체와 배양한 세포주기 표지자 Fucci를 telomelysin (OBP-301), cisplatin 혹은 방사선으로 처리합니다. (The CD133-positive, stem-like human gastric cancer cells with the cell cycle marker Fucci which had been
cultured as spheroids were treated with either telomelysin (OBP-301), cisplatin or radiation.)Cisplatin 혹은 방사선으로 처리한 암세포 덩어리는 같은 크기로 유지되며, 세포 대부분은 세포주기 G1기를 넘기지 않습니다.
(빨간색 참조) (The clumps of cancer cells treated with cisplatin or radiation remained the same size and the majority of the cells did not proceed the cell cycle beyond the G1 phase (seen in red).)한편, telomelysin으로 처리한 암세포 덩어리는 빨강에서 노랑 및 초록으로 색이
변하며, 크기는 점점 작아집니다.이는 세포줄기와 같은 세포 상태로 세포 주기를 정지하는 p53과 p21의 발현을 telomelysin이 억제하는 것을 의미합니다. (This indicates that
telomelysin inhibits the expression of p53 and p21, both of which are responsible for arresting the cell cycle of stem-like cells.)Telomelysin은 E2F-1의 발현을 증가시켜서, 세포 주기가 정반대로 활성화됩니다. (Telomelysin also increases the expression of E2F-1, which leads to the activation of the cell cycle by contraries.)
*이 이미지는 컨포컬 레이저 스캐닝 현미경(Confocal Laser Scanning Microscope) FV10i로 8일 동안 연속으로 촬영하였습니다. |
이미지 데이터 제공 :
Shuya Yano, Toshiyoshi Fujiwara
Department of Gastroenterological Surgery Transplant and Surgical oncology, Okayama University Graduate School of Medicine, Dentistry and Pharmaceutical Sciences.
Reference:
Yano S, Tazawa H, Hashimoto Y, Shirakawa Y, Kuroda S, Nishizaki M, Kishimoto H, Uno F, Nagasaka T, Urata Y, Kagawa S, Hoffman RM, Fujiwara T. 유전자 재조합 종양 용해성 아데노 바이러스(genetically engineered oncolytic adenovirus)는 정지 암 줄기세포와 같은 세포(quiescent cancer stem-like cells)를 S/G2/M 단계로 유도하고 가둡니다. Clin Cancer Res. December 1, 2013 19:6495-6505.
Fucci Induced Spheroid of HT29 Cell Line
이미지 데이터 제공 :
Dr. Yuji Mishima, Dr. Kiyohiko Hatake
Clinical Chemotherapy, Cancer Chemotherapy Center, Japanese Foundation for Cancer Research
전이 생태 및 다층 근육 아세포 병풍구조 내의 섬유아세포의 세포-세포 연결
이미지 데이터 제공 :
Eiji Nagamori, Ph.D Masahiro Kino-oka, Ph.D. Department of Biotechnology, Graduate School of Engineering, Osaka University |
YFP를 전사인자로 사용한 제프라피쉬 배아에서 레티노산 신호의 시각화 (Visualizing Retinoic Acid Signaling in A Zebrafish Embryo Using YFP as a Reporter)
이미지 데이터 제공 :
Satoshi Shimozono, Ph.D. Atsushi Miyawaki, M.D., Ph.D.
Laboratory for Cell Function Dynamics, Advanced Technology Development Core, RIKEN Brain Science Institute
Reference:
Shimozono S. et al. 발달 중인 배아의 점진적인 내인성 레티노산의 시각화. (Visualization of an endogenous retinoic acid gradient across embryonic development.)Nature 496, 363-366 (18 April 2013)
항체 의존성 세포 독성(Antibody Dependent Cellular Cytotoxicity, ADCC)의 관찰
RPMI 4788 세포(인간 결장암 세포주)는 항체의약품 cetuximab으로 처리하고 NK 세포(Natural Killer Cell)와 함께 배양하면 ADCC는 NK 세포 추가 후에 FV10i를 사용하여 관찰할 수 있습니다.
(RPMI 4788 cells (human colon cancer cell line) were treated with an antibody drug, cetuximab, and co-cultured with natural killer (NK) cells ADCC was observed using the FV10i after addition of NK cells)
Cetuximab: Alexa Fluor 647 (red) NK cells: ZsGreen (green) 죽은 세포 감지: DAPI (blue) |
이미지 데이터 제공 :
Dr. Yuji Mishima, Dr. Kiyohiko Hatake
Clinical Chemotherapy Department, The Cancer Chemotherapy Center of the Japanese Foundation for Cancer Research
다양한 농도의 항암제 시스플라틴(Cisplatin)의 효과 관찰
항암제 시스플라틴(Cisplatin) 처리한 HT-29 세포의 세포주기는 HT-29를 발현하는 Fucci를 저속 촬영(Time-lapse)하여 관찰하였습니다.세포는 대조군( 0 ug/ml), 저농도(0.25 ug/ml), 고농도(2.5 ug/ml)의 서로 다른 농도의 Cisplatin으로 처리하여 35mm 유리 바닥 디쉬에서 48시간 동안 배양하였습니다. |
이미지 데이터 제공 :
Dr. Yuji Mishima, Dr. Kiyohiko Hatake
Clinical Chemotherapy Department, The Cancer Chemotherapy Center of the Japanese Foundation for Cancer Research
긴 돌기 세포-세포 융합(Cell–cell Fusion with Long Projections) 동안 포스포이노시티드(Phosphoinositides)의 Localization
1 µg/ml 독시사이클린(doxycycline)에서 생성된 RAW264.7 세포는 Reporter를 발현하며, 이를 10 ng/ml RANKL로 48시간 동안 자극합니다. (RAW264.7 cells expressing the reporter constructs in the presence of 1 µg/ml doxycycline were stimulated with 10 ng/ml RANKL for 48 h.)각 Localization이 PtdIns(4,5)P2은 빨간색으로 보이며, PtdIns(3,4,5)P3은 녹색으로 보입니다.프레임은 총 34분동안 2분마다 25µm 간격으로 찍습니다. |
이미지 데이터 제공 :
Tsukasa Oikawa, Ph.D.
Department of Molecular Biology, Hokkaido University Graduate School of Medicine
Reference:
Oikawa T, et al. 원기둥 모양의 podosomes/invadopodia의 Tks5-의존 형성은 세포-세포 융합에 영향을 줍니다.J Cell Biol. 197(4):553-568(2012).
헬라 세포(HeLa Cell)*1
염색 시약: YFP (Actin)
렌즈: 60XW NA1.2 레이저 파장: 473nm 시간 간격: 매 3.5분 (총 12시간) |
쥐의 뇌
쥐의 뇌를 DAPI(nuclei - blue), Alexa 488(Actin - green), Alexa 568(Neurofilament - red)로 형광 표지합니다.9개의 관심 영역을 1024x1024로 Z축 14개 부분 이상으로 자동 획득하고, FV10i 소프트웨어로 이미지를 이어 붙입니다. |
헬라 세포(HeLa Cell)*1
시간 간격: 밤새 매 20분 간격으로 촬영
Green: GFP Magenta: Mito Tracker Red |
*1 비록 헬라 세포가 의료 연구에서 가장 중요한 세포주가 되었다고 해도, 과학에 대한 Henrietta Lacks의 공헌이 동의를 받지 않은 것이었다는 것을 인정해야만 합니다. 이로 인해 면역학, 전염병, 암에 대한 중요한 발견이 이루어졌지만 사생활, 윤리, 의학적 동의에 대한 중요한 논의도 촉발되었습니다.
Henrietta Lacks의 삶과 현대 의학에 대한 그녀의 공헌을 알아보려면 여기를 클릭하세요.
http://henriettalacksfoundation.org/
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