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Ausstattung
 | The Olympus IX83 inverted microscope has been integrated into our IXplore systems. IXplore Systems are designed to provide solutions-based packages that suit your research application needs. |
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Ausbaufähig für wachsende ForschungsanforderungenDas vollmotorische IX83 wurde entwickelt, um die verschiedensten Forschungsanforderungen erfüllen. Mit Zusatzmodulen für höhere Funktionalität ermöglichen beide Mikroskope eine Vielzahl von Imaging-Techniken – von einfacher Dokumentation bis hin zu Langzeit-Zeitrafferaufnahmen und anderen anspruchsvollen Techniken. |
IX83: Zwei-Deck-System
Ermöglicht die schnelle und vollautomatische Geräteauswahl bei Lebendzell-Experimenten und anspruchsvoller Bildaufzeichnung. Die Zwei-Deck-Konfiguration bietet eine hervorragende Erweiterbarkeit. | IX83: Ein-Deck-System
Dieses intelligent designte, motorische Mikroskop mit großer Sehfeldzahl (FN 22, linker seitlicher Ausgang) ist mit dem IX3-ZDC2 kompatibel und setzt beim Lebendzell-Imaging neue Maßstäbe. |
Für Unterstützung |
Spezifikationen
| Mikroskopieverfahren > Fluoreszenz (Anregung durch blaues/grünes Licht) | ✓ | |
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| Mikroskopieverfahren > Fluoreszenz (Anregung durch ultraviolettes Licht) | ✓ | |
| Mikroskopieverfahren > Differenzieller Interferenzkontrast (DIC) | ✓ | |
| Mikroskopieverfahren > Phasenkontrast | ✓ | |
| Mikroskopieverfahren > Hellfeld | ✓ | |
| Fokus > Motorgesteuert |
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| Fokus > Z-Drift-Kompensator | ✓ | |
| Beobachtungstuben > Weitfeld (FN 22) > Schwenkbarer Binokulartubus | ✓ | |
| Beobachtungstuben > Weitfeld (FN 22) > Trinokulartubus | ✓ | |
| Tisch > Motorgesteuert | Contact your local sales representative to hear about motorized stage options | |
| Tisch > Manuell > Plantisch | ✓ | |
| Tisch > Mechanischer > Mechanischer Kreuztisch mit Rechtstrieb IX3-SVR |
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| Kondensor > Motorisiert > Universalkondensor | NA 0,55/ A.A. 26,2 mm | |
| Kondensor > Manuell > Universalkondensor | Trocken: NA 0,9/ A.A. 1,5 mm, Öl: NA 1,4/ A.A. 0,63 mm (1,25-fach - 100-fach) | |
| Kondensor > Manuell > Kondensor mit sehr großen Arbeitsabstand | NA 0,3/A.A. 73,3 mm | |
| Abmessungen (B × T × H) | 323 (B) x 475 (T) x 686 (H) mm (1-Deck-Standardkonfiguration) | |
| Gewicht | 47 kg (1 Deck Standardkonfiguration) |
Anwendungen
Lichtinduzierte oszillierende/anhaltende Expression von Ascl1 in neuralen Vorläuferzellen 661
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Zur oszillierenden Expression eines Transgens wurde in einem dreistündigen Intervall zur Beibehaltung der Proliferation neuraler Vorläuferzellen 1 min Blaulicht appliziert. Zur anhaltenden Expression des Transgens wurde in einem 30-minütigen Intervall als Promoter zur Bestimmung des neuronalen Schicksals 2 min Blaulicht appliziert.
Bilddaten mit freundlicher Genehmigung von: Itaru Imayoshi und Ryoichiro Kageyama Institute for Virus Research, Universität Kyoto |
Referenzmaterial:
Itaru Imayoshi, Akihiro Isomura, Yukiko Harima, Kyogo Kawaguchi, Hiroshi Kori, Hitoshi Miyachi, Takahiro Fujiwara, Fumiyoshi Ishidate und Ryoichiro Kageyama, "Oscillatory Control of Factors Determining Multipotency and Fate in Mouse Neural Progenitors", Science 1242366, Online-Veröffentlichung am 31. Oktober 2013.
Synthetische ERK-Aktivitätsausbreitung durch ein lichtreguliertes Genpromotersystem
Referenz:
Kazuhiro Aoki, Yuka Kumagai, Atsuro Sakurai, Naoki Komatsu, Yoshihisa Fujita, Clara Shionyu, Michiyuki Matsuda. "Stochastic ERK Activation Induced by Noise and Cell-to-Cell Propagation Regulates Cell Density-Dependent Proliferation", Molecular Cell, 17. Oktober 2013.
Echtzeit-Imaging für Ring1BYFP/YFP ME
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Konstitutiver Austausch von Ring1B-YFP an den PRC1-Clustern. Ein PRC1-Cluster in Ring1B YFP/YFP MEFs wurde Photobleaching ausgesetzt und danach mittels sequenziellem Imaging dargestellt.
Bilddaten mit freundlicher Genehmigung von: Kazuhiro Aoki und Michiyuki Matsuda Imaging Platform for Spatio-Temporal Information, Graduate School of Medicine, Universität Kyoto | |
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Konstitutiver Austausch von Ring1B-YFP an den PRC1-Clustern. Ein PRC1-Cluster in Ring1B YFP/YFP MEFs wurde Photobleaching ausgesetzt und danach mittels sequenziellem Imaging dargestellt.
Bilddaten mit freundlicher Genehmigung von: Kyoichi Isono und Haruhiko Koseki Laboratory for Developmental Genetics, RIKEN Center for Integrative Medical Sciences (IMS-RCAI) |
Referenz:
SAM domain polymerization links subnuclear clustering of PRC1 to gene silencing. Isono K, et al. Developmental Cell, 26, 565-577 (2013).
Gehirnschnittkultur Gliazelle
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Bilddaten mit freundlicher Genehmigung von:
Masafumi Minami Department of Pharmacology, Graduate School of Pharmaceutical Science, Universität Hokkaido |
Transmesenteriale Migration von enterischen Neuralleistenzellen (ENCCs)
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Bilddaten mit freundlicher Genehmigung von:
Hideki Enomoto Neuronal Differentiation and Regeneration, RIKEN CENTER FOR DEVELOPMENT BIOLOGY |
Informationsquellen
Zugehörige Komponenten
Komponenten
- Räumliche und zeitliche Präzision
- Perfekte Reproduzierbarkeit
- Flexibilität
- Darstellung von Zelloberflächen mit hoher Z-Auflösung
- Minimales Hintergrundrauschen
- Viele Anregungswellenlängen zur Auswahl
- Echte Vielfarben-TIRFM
- Anpassung der Eindringtiefe per Software
- Anwenderfreundlichkeit
- Perfekte Kontrolle über alle Umgebungsbedingungen
- Erste durchdachte, am Arbeitsablauf orientierte Inkubations-Komplettlösung
- Offenes Design
- Stets im Fokus
- Anwenderfreundliches Design
- Speziell für das Lebendzell-Imaging
- Hochpräzises Imaging mehrerer Bereiche mit der cellSens Software
Farbkameras
Monochromkameras
Elektronenvervielfachende CCD-Kameras verstärken optische Signale, ohne das Rauschen zu erhöhen. Sie erfassen Hochgeschwindigkeitsaufnahmen von unscharfen Proben und eignen sich zur Fluoreszenzdarstellung von Lebendzellen mit Anregungslicht geringerer Intensität. Sie werden zur Beobachtung der Protein-Interaktion in einer Zelle und zur Echtzeit-Bildgebung verwendet.
- CCD-Technologie zur Erkennung bei ultraschwachem Licht
- Spezielle, hochempfindliche wissenschaftliche Kameraplattform
- Quantifizierbare und reproduzierbare Bildgebung
- Gekühlter, monochromatischer 1,4 MP Farb-CCD-Sensor
- Geräuscharm und hohe Empfindlichkeit
- Schnelle Live Bildgebung
Software
Das Layout der Benutzeroberfläche der cellSens Software mit intuitiver Bedienung und nahtlosem Arbeitsablauf kann benutzerindividuell verändert werden. Die cellSens Software ist in verschiedenen Versionen verfügbar und bietet eine Vielzahl an Funktionen, die für spezifische Bildgebungsanforderungen optimiert sind. Funktionen wie der Graphic Experiment Manager und der Well Navigator können die 5D-Bildaufnahme erleichtern. TruSight Dekonvolution verbessert die Auflösung, und mit dem Conference Mode können Aufnahmen geteilt werden.
- Mehr Effizienz bei der Versuchsdurchführung mit der TruAI Deep Learning Segmentierungsanalyse für eine markerfreie Zellkernerkennung und Zellzählung
- Modulare Imaging-Software-Plattform
- Intuitive, anwendungsorientierte Benutzeroberfläche
- Großer Funktionsumfang von der einfachen Momentaufnahme bis hin zu komplexen, mehrdimensionalen Echtzeitexperimenten
Advanced Imaging Solutions (Systeme)
Lichtquellen
- Sechs unabhängige Festkörper-Lichtquellen
- Manueller Filterwechsel für verschiedene Bandpässe
Dieses lichtleitergekoppelte Beleuchtungssystem erleichtert Fluoreszenzanwendungen und reduziert thermische Effekte und Vibrationen. Es ist einfach zu installieren und weist eine hervorragende Langzeit- und Kurzzeitstabilität auf. Mit einer sechsstufigen Irisblende wird die Intensität effektiv gesteuert und eine einfache, stufenweise Einstellung der Intensität möglich. Der vorzentrierte Brenner senkt die Betriebskosten.
- Leistungsstarker 130-W-Brenner mit langer Lebensdauer
- Stabile und gleichmäßige Lichtleistung
- Gleichmäßige Beleuchtung ohne Justierung
- Ausgestattet mit bis zu vier leistungsstarken Festkörper-LEDs
- 365, 385, 405, 447, 460, 525, 635, 660 und 735 nm verfügbar
- Ultraschnelle Umschaltzeiten im Mikrosekundenbereich